独脚金内酯; Strigolactone

体外实验：

溶解性(25°C)：乙醇：10mg/ml；DMSO：100 mg/mL (335.24 mM)

*请参考溶解度信息来选择合适的溶剂配制储备液。配成溶液后，请分装保存，避免反复冻融。

*Purescix内部测试了所有化合物的溶解度，若实际溶解度与公布的值略有不同为正常现象，是由于批次之间的轻微差异造成的，请适当调整之后使用。

体内实验(现用现配)：

10%DMSO→ 90%Corn Oil

此方案可获得≥2.5mg/ml（8.38mM）的澄清溶液

以1mL工作液为例，取100μL25mg/ml的澄清DMSO储备液加到900μL玉米油中，混合均匀。

*以上溶解方案请先按照上述体外实验溶解数据配制澄清的储备液，再依次添加助溶剂。

*以上溶剂前显示的百分比是指该溶剂在终溶液中的体积占比。

*以上溶解方案仅供参考，您根据实验动物和给药方式进行适当的调整。

*体内实验的工作液，建议现用现配，当天使用。

*如果在配制过程中出现沉淀、析出现象，可以通过加热和/或超声的方式助溶。

产品描述：独角金内酯(Strigolactones、rac-GR24)是近年来发现的一种植物激素或其前体，能够抑制植物的分枝和侧芽的生长，它与生长素和细胞分裂素协同控制植物的分枝（蘗）数量。作为一种产生于植物根部的类胡萝卜素衍生物，独角金内酯可以促进植物和土壤微生物的共生作用。另外，在植物与其寄生植物相互作用的过程中，独角金内酯还起到信号分子的作用，它可以诱导寄生植物如独角金属(Striga spp.)、列当属(Orobanche spp.)种子的萌发。用途如下：

1、抑制植物侧枝生长：可作为信号物质在植物体内移动并抑制植物侧枝的形成，从而抑制植物侧枝的无效分蘗，培育优质理想植株，提高粮食作物产量；在园艺作物方面通过施用独角金内酯抑制剂来促进果树分枝，达到高产的效果。

2、刺激寄生植物种子萌发：在农作物播种或出苗前适量施用独脚金内酯类似物即可诱导寄生植物种子的萌发来控制杂草的产生，是减轻寄生植物危害的一种有效途径。利用该特性可应用于新型除草剂的合成和培育抗寄生植物侵袭的作物。

3、促进菌根共生：SLs已被证实是植物与AM真菌共生的主要信号物质，在一些菌根共生现象的植物中，植物SLs的合成，使其可维持块茎及块茎周围土壤环境中SLs处于较高水平，利于菌根共生。

4、增强非生物胁迫下植物的生长发育：独脚金内酯可以通过调节细胞内物质的运输来调节植物对逆境胁迫的反应，比如在拟南芥中添加独脚金内酯，可以有效促进拟南芥的生长和光合作用，从而提高其抗旱和耐盐的能力。

IC50：IC50: 72 ± 6 µM (BAEC)

体外研究(In Vitro)：【来源于公开文献，仅供参考】

GR24以剂量依赖性方式抑制内皮细胞增殖[1]。

GR24抑制上内皮管状结构的形成，但不破坏原有的管状结构[1]。

GR24可以降低野生型和ＳＬ合成缺陷突变体的侧根密度[2]。

GR24通过使生长素合成紊乱，从而抑制芽的生长，最终导致植物的分支形成被抑制[3]。

GR24提高愈伤组织的生物量和抗氧化酶活性进行有效缓解植物的非生物胁迫[4]。

体内研究(In Vivo)：【来源于公开文献，仅供参考】

GR-24（25nmol；受精鸡卵；GR24甲基纤维素圆盘植入CAM诱导48小时）具有明显的抗血管生成能力且具有剂量依赖性，在25nmol/CAM剂量下，抑制率达到90%[1]。

GR-24（0.1-10µM；转基因斑马鱼胚胎）抑制远端节段间血管的正常形成[1]。

1. 我司产品为非无菌包装，若用于细胞培养，请提前做预处理（如0.22μm滤膜过滤），除去热原细菌，否则会导致染菌。

2. 溶解性是在室温下测定的，如果温度过低，可能会影响其溶解性。

3. 科研试剂，严禁用于人体和临床。

4. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

5. 部分产品我司仅能提供部分信息，我司不保证所提供信息的权威性，以上数据仅供参考交流研究之用。

[1]. Carrillo P, Martínez-Poveda B, Medina MÁ, Quesada AR. The strigolactone analog GR-24 inhibits angiogenesis in vivo and in vitro by a mechanism involving cytoskeletal reorganization and VEGFR2 signalling. Biochem Pharmacol. 2019 Oct;168:366-383.

[2]. Kapulnik Y, Delaux PM, Resnick N, Mayzlish-Gati E, Wininger S, Bhattacharya C, Séjalon-Delmas N, Combier JP, Bécard G, Belausov E, Beeckman T, Dor E, Hershenhorn J, Koltai H. Strigolactones affect lateral root formation and root-hair elongation in Arabidopsis. Planta. 2011 Jan;233(1):209-16. doi: 10.1007/s00425-010-1310-y. Epub 2010 Nov 16. PMID: 21080198.

[3]. Hayward A, Stirnberg P, Beveridge C, Leyser O. Interactions between auxin and strigolactone in shoot branching control. Plant Physiol. 2009 Sep;151(1):400-12.

[4]. Zulfiqar, H., Shahbaz, M., Ahsan, M. et al. Strigolactone (GR24) Induced Salinity Tolerance in Sunflower (Helianthus annuus L.) by Ameliorating Morpho-Physiological and Biochemical Attributes Under In Vitro Conditions. J Plant Growth Regul 40, 2079–2091 (2021).

[5]. Gomez-Roldan V, Fermas S, Brewer PB, Puech-Pagès V, Dun EA, Pillot JP, Letisse F, Matusova R, Danoun S, Portais JC, Bouwmeester H, Bécard G, Beveridge CA, Rameau C, Rochange SF. Strigolactone inhibition of shoot branching. Nature. 2008 Sep 11;455(7210):189-94.

[6]. Akiyama K, Matsuzaki K, Hayashi H. Plant sesquiterpenes induce hyphal branching in arbuscular mycorrhizal fungi [J]. Nature, 2005, 435(7043): 824-827.

[7]. CHEN S S,WANG X,WANG Y Z,et al.Improved de novo assembly of the achlorophyllous Orchid Gastrodia elata[J].Front Genet,2020,9:580568.

[8]. Kong, CC., Ren, CG., Li, RZ. et al. Hydrogen Peroxide and Strigolactones Signaling Are Involved in Alleviation of Salt Stress Induced by Arbuscular Mycorrhizal Fungus in Sesbania cannabina Seedlings [J]. Journal of Plant Growth Regulation, 36, 734-742 (2017).

[9]. Haitao, Shi, Chuan, et al. Comparative physiological, metabolomic, and transcriptomic analyses reveal mechanisms of improved abiotic stress resistance in bermudagrass[Cynodon dactylon (L). Pers.] by exogenous melatonin[J]. Journal of ExperimentalBotany, 2015, 66(3): 681-694.